從設計到驗證—CRISPR基因敲除細胞株實戰(zhàn)案例
CRISPR/Cas9 是源于細菌和古菌的適應性免疫系統(tǒng)??茖W家將其改造為強大的基因編輯工具,其核心組件包括:
向?qū)NA(sgRNA):約20個堿基的序列,負責特異性識別并結合目標DNA位點。
Cas9 核酸酶: 在 sgRNA 引導下,精準切割靶DNA雙鏈,產(chǎn)生雙鏈斷裂(DSB)。
CRISPR/Cas9 的劃時代意義在于其設計簡便(僅需設計sgRNA序列)、成本低廉、編輯效率高且可同時靶向多個基因位點(多重編輯)。其中,基因敲除(Knockout, KO) 作為其最核心、應用最廣泛的功能,已成為解析基因功能、構建疾病模型、開發(fā)新型療法的基石工具。
基因敲除的核心原理
CRISPR/Cas9本身不直接“刪除”基因,而是巧妙地利用細胞自身的DNA損傷修復機制來實現(xiàn)基因功能的永久性失活:
針對編碼基因
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精準打擊: sgRNA引導Cas9在目標基因的關鍵功能區(qū)域(如編碼蛋白基因的5’端核心外顯子)制造DSB。
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修復路徑選擇- NHEJ主導: 面對DSB,細胞主要有兩種修復途徑:需要同源模板的高保真修復(HDR)和快速但易錯的非同源末端連接(NHEJ)。在缺乏修復模板的常規(guī)條件下,NHEJ是絕大多數(shù)細胞的首選修復機制。
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NHEJ的“錯誤”成就: NHEJ修復過程并非完美,常在斷裂點處引入隨機的、小片段的堿基插入或缺失(Insertions/Deletions, Indels)。
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移碼突變:當這些Indels發(fā)生在基因的蛋白質(zhì)編碼區(qū)(外顯子),且插入或缺失的堿基數(shù)不是3的整數(shù)倍時,將導致后續(xù)所有密碼子的閱讀框發(fā)生偏移,即移碼突變(Frameshift Mutation)。移碼突變幾乎必然在短時間內(nèi)產(chǎn)生提前終止密碼子(Premature Stop Codon)。
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基因功能的徹底瓦解:無義介導的mRNA降解(NMD): 細胞質(zhì)中的NMD機制能高效識別并降解含有提前終止密碼子的異常mRNA,導致目標基因的轉(zhuǎn)錄本水平急劇下降。
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功能蛋白缺失: 即使有少量截短蛋白僥幸翻譯產(chǎn)生,其結構也必然殘缺不全,完全喪失正常生物學功能。至此,目標基因被功能性敲除。
非編碼基因或大片段DNA
若要刪除特定區(qū)域(如整個基因、特定功能域、調(diào)控元件或病毒序列),需在目標片段上下游邊界各設計一條高特異性的sgRNA。共轉(zhuǎn)Cas9和這兩條sgRNA,在基因組上同時產(chǎn)生兩個DSB。細胞在進行NHEJ修復時,傾向于將兩個相距較遠的斷端直接連接起來,從而精確刪除兩個切割位點之間的DNA大片段。這是一種高效、定向的“基因手術”。
案例分享—基因敲除單克隆細胞株構建
泓迅生物利用CRISPR/Cas9基因編輯技術的原理,使用電轉(zhuǎn)法敲除人胰腺癌細胞系(MIA PaCa-2)的目的基因,再分離培養(yǎng)單個細胞進行單克隆化,擴增培養(yǎng)后通過PCR及測序驗證,獲得目的基因敲除的陽性單克隆。
1、在需求敲除片段兩端分別設計1條高靶向的sgRNA序列。
2、將gRNA-A1、gRNA-A2進行化學修飾合成后分別與Cas9蛋白組裝成RNP,單克隆化培養(yǎng)與擴增。
3、三級PCR鑒定(Region 1/2/3)
單克隆1B4通過PCR鑒定為純合子。
4、Sanger測序驗證
DNA水平-Sanger測序顯示,靶區(qū)間檢測到15691 bp大片段缺失。
泓迅生物成功構建目的基因純合敲除的MIA PaCa-2單克隆細胞株(1B4),經(jīng)多級分子驗證及無菌質(zhì)檢,符合標準細胞株交付要求。該模型適用于膜融合機制、胰腺癌分泌通路等研究。
CRISPR/Cas9介導的基因敲除已成為功能基因組學研究和基因治療開發(fā)的基石技術。其高效性、便捷性和可擴展性極大地加速了我們對基因功能的理解,并為治療遺傳性疾病、感染性疾?。ㄈ绨滩。┖桶┌Y提供了革命性的工具。然而,脫靶效應、體內(nèi)遞送瓶頸及復雜基因調(diào)控需求等挑戰(zhàn)將推動技術持續(xù)迭代,最終實現(xiàn)更安全有效的基因治療臨床應用。
泓迅生物——細胞基因編輯一站式服務
泓迅生物全新推出繼質(zhì)粒DNA后CRISPR RNP介導的細胞基因編輯服務:平臺依托先進的技術和經(jīng)驗豐富的科研團隊,打造從方案設計、sgRNA設計及化學合成、高活性重組Cas9蛋白,RNP復合物組裝到敲除細胞系構建的全流程服務。
方案設計-合成-細胞系構建一體化服務
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全模式物種 CRISPR sgRNA 設計
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